m6A甲基化检测方法及优劣势盘点
【字体: 大 中 小 】 www.yiwulimax.com 时间:2018年05月11日 来源:联川生物
今天的文章将围绕m6A甲基化检测方法展开,详细阐述m6A甲基化检测方法的具体步骤及优劣势,一起来学习吧~
最早发现的RNA甲基化修饰包括假尿苷和5mC等。在mRNA中,常见的修饰包括m6A、m1A、5mC等。早在上世纪70年代,人们已经在真核生物的mRNA和lncRNA中发现了m6A修饰。但是受到技术手段的限制,检测m6A尤其是对m6A进行定量,甚至是从单碱基水平鉴定m6A,一直进展缓慢。随着高通量测序技术(next generation sequencing, NGS)的发展以及液相色谱灵敏度的提高,科学家们在此基础上发展了多种m6A检测方法。
目前检测m6A所用的技术手段包括高通量测序、比色法以及液相色谱质谱联用(LC-MS),具体方法包括MeRIP-seq、miCLIP-seq、SCARLET、LC-MS/MS等。下面就来介绍目前较为主流的四种检测m6A的方法,其中LC-MS/MS和比色法能够检测mRNA整体的m6A水平,而m6A-seq和miCLIP-seq属于高通量测序手段。
1.LC-MS/MS
图1 LC-MS/MS检测RNA中m6A水平分析流程图
LC-MS/MS在液相质谱的基础上采用串联质谱,能够获得分子离子峰和碎片离子峰,可对碱基同时进行定性和定量分析。
如图1所示,第一步使用TRIzol提取完Total RNA后,既可以用oligodT磁珠对mRNA进行富集,也可以使用rRNA去除试剂盒获得包括mRNA、lncRNA等在内的RNA。第二步使用核酸酶P1(Nuclease P1)将RNA从单链消化成单个碱基。第三步加入碱性磷酸酶和碳酸氢铵后孵育数小时,将样本注射入液相色谱仪,根据出峰的保留时间面积计算各个碱基的含量。第四步进入质谱串联分析,单个核糖核苷酸会被离子化,同时被打断成五碳糖和嘧啶或嘌呤,最后根据出峰的保留时间计算m6A的面积。最后根据m6A和总腺嘌呤的比例就能算出m6A在mRNA上整体的甲基化程度。
2.比色法
图2 m6A甲基化定量试剂盒流程展示及结果
比色法与LC-MS/MS比较相似,也是从整体水平上检测RNA上m6A甲基化水平。相对于LC-MS/MS较为繁琐的操作,比色法更为简便。研究人员既可以提取total RNA,也可以利用oligodT磁珠富集mRNA。Epigentek公司推出的这款名为EpiQuik M6A RNA Methylation Quantification Kit试剂盒其核心原理与ELISA反应类似,经过优化后检测m6A灵敏度会更高。
3.m6A-seq
图3 MeRIP-seq(m6A-seq)与miCLIP-seq实验流程
2012年之前,几乎没有从全基因组或全转录组水平上鉴定m6A修饰的文章。之后两篇独立发表的论文第一次从转录水平上,大范围、高通量地鉴定了人和小鼠m6A的甲基化水平。这种方法被称为MeRIP-seq或m6A-seq。
如图3所示,第一步先对mRNA进行片段化,接下来使用带有m6A抗体的免疫磁珠对发生m6A甲基化的mRNA片段进行富集,然后将富集到的mRNA片段纯化后构建高通量测序文库进行上机测序。另外需要单独构建一个普通的转录组文库作为对照。最后将2个测序文库放在一起进行生物信息学分析,得到m6A甲基化程度较高的区域,也叫做m6A peak。
这种方法优点是方便快捷成本低廉,可以对发生高甲基化的mRNA区域进行一个定性分析。但是MeRIP-seq只能鉴定m6A高甲基化的区域,并不能做到单碱基的分辨率。送样要求建议为肝脏、脑等转录较为活跃的组织,如果细胞样本建议1x109的细胞量(约为8板细胞以上)。最后总RNA含量推荐在800ug以上,mRNA富集在10-30ug以上才会进入下游实验。
4.miCLIP-seq
已知miCLIP-seq等方法能够对m6A做到单碱基的分辨率。这种方法也会用到m6A抗体,但是会使用紫外交联的方法进行免疫共沉淀。
如上图3所示,第一步依旧是对富集完的mRNA进行片段化。第二步,使用带有m6A抗体免疫磁珠与带有m6A的mRNA片段进行结合。第三步,使用紫外交联进行免疫共沉淀后,在mRNA片段的3’端连上接头序列,在5’端加上P32放射性标记后进行移膜。第四步,根据放射性标记进行切膜回收后,对mRNA片段进行反转录和纯化回收。第五步,对反转录组的cDNA进行环化。第六步,对环化的cDNA进行复线性化,然后构建测序文库上机测序。在这里采用P32放射性标记属于非必须选项。
今天的内容讲完啦,大家记得收藏好慢慢学习哦~
下期预告:m6A甲基化整体研究思路之m6A甲基化课题设计
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