开发一种新的转印操作

尽管上一节提到缓冲液和转印条件的选择可能非常复杂，但Towbin等定义的槽转印系统（1979）和由Kyhse-Anderson定义的半干转印系统（1984）能适用于大部分的蛋白质样品。这两者都代表了出色的起点。不过，假如它们的确并非最适合于某个特定蛋白质，那么可调整转印条件，以配合蛋白质的生化特性。Otter等（1987）介绍了一种有趣的优化策略，适合分子量在8,000至>400,000 kDa范围内的蛋白质的有效转移。转印缓冲液可添加0.01% SDS，以维持高分子量蛋白质的溶解度，以及20%甲醇，以增强吸附。电场可以两个阶段施加。转印的最初一小时是以低电流密度，以减慢低分子量蛋白质的迁移速率，增加它们在膜上的停留时间。之后以高电流密度，以洗脱高分子量的蛋白质。

在开发一种新的转印操作或处理一种新的样品类型时，凝胶应被染色，以验证所有蛋白质是否从凝胶上彻底洗脱。强烈建议在每块凝胶上点上一道预染marker，以监控转印效率。一些蛋白质在标准转印缓冲液中的溶解度有限，需要修改缓冲液试剂，以防止沉淀。另外一些蛋白质，如组蛋白和核糖体蛋白，在标准转印缓冲液中带正电荷，将向阴极迁移。在凝胶的阴极端放上一张Immobilon®-P膜，可实现这些蛋白质的成功转印。转印后的膜染色也很有用，可确保目标蛋白在印迹上。详见下面的“蛋白质观察”，了解能与后续的免疫检测兼容的染料信息。

另一个监控蛋白质转移的方法是在电转前对SDS-PAGE凝胶染色（Thompson和Larson，1992）。在这种方法中，凝胶在电泳后，或电泳过程中用考马斯亮蓝染色。免疫检测过程中的转移蛋白仍保持染色状态，从而为蛋白定位和大小确定提供一套背景marker（Thompson和Larson，1992）。

准备蛋白质鉴定的膜

对于染色和免疫检测

PVDF膜应用去离子水清洗，以去除任何凝胶碎片。转印膜随后可与封闭液一起孵育。

对于通过透照法的快速免疫检测和观察

在转印完成后，PVDF膜应彻底干燥，才能继续染色或进行免疫检测。干燥增强了蛋白质与PVDF聚合物的吸附，有助于减少后续分析过程中的解吸附。随着转印膜变干，它变得不透明。这种光学变化是一种表面现象，会掩盖孔深处水的保留。转印膜应按照建议的时间干燥，以确保所有液体从膜的孔结构内蒸发。

保存

在蛋白质转移到膜上之后，PVDF膜可以干燥保存很长一段时间，对膜或蛋白质无不良影响（4 °C最多两周；–20 °C最多两个月；–70 °C可保存更长时间）。然而，一旦在不可控的环境下长期保存，一些蛋白质可能对化学变化（如氧化、脱酰胺化、水解）敏感。建议在低温下长期保存。在进一步分析之前，干燥的膜必须在100%甲醇中浸湿。

（实际内容以《蛋白质印迹手册》印刷版为准，如有错漏，敬请谅解）

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